Аннотации:
В статье рассматривается возможность применения комплекса полисахаридов бурых водорослей,
состоящего из фукоидана не менее 60 % и альгината натрия - 40 %. С целью сокращения
длинных полисахаридных цепочек фукоидана был применен метод ультразвуковой микронизации (630 Вт/л, время экспозиции 30 минут). Целью работы являлось исследование влияния полисахаридного комплекса (ПК) в нативной и микронизированной форме на хлебопекарные
свойства пшеничной муки. Использование ПК как в нативной, так и в микронизированной
форме приводит к увеличению набухания и укреплению сырой клейковины. Максимальное
значение массовой доли клейковины при использовании нативного ПК составляет 38,6 %, что больше массовой доли клейковины контрольного образца на 7,2 %. Внесение фукоидана
и альгината натрия позволило заметно укрепить клейковину, что видно из полученных
данных ИДК (на 5 ед.). Для исследования форм связи влаги в образцах клейковины проводили
исследования методом дифференциальной сканирующей калориметрии и термогравиметрии
на приборе синхронного термического анализа STA 449 F1 Jupiter (NETZSCH, Германия).
Скорость изменения температуры нагрева составляла 10 оС/мин, максимальная температура
нагрева 493 К. Использование ПК оказало влияние на количество осмотически связанной
влаги, так, при использовании нативного комплекса ее количество увеличилось на 70 %, а микронизированного - на 18 %. Количество полиадсорбционно связанной влаги увеличивается
на 12 % для образца, полученного с использованием нативного ПК, и на 6 % для образца, полученного с использованием микронизированного. Количество адсорбционной влаги мономолекулярных слоев снизилось в 2 раза в образце клейковины с добавлением нативного
ПК. За счет более быстрого проникновения воды в структуру белка и полисахаридного
комплекса частично снизилось количество физико-механически связанной влаги в экспериментальных
образцах (на 79 % при использовании нативной формы и на 13 % при использовании
микронизированной формы). The article considers the possibility of using a complex of brown algae polysaccharides, consisting
of fucoidan of at least 60 % and sodium alginate - 40 %. In order to reduce the long polysaccharide
chains of fucoidan, the method of ultrasonic micronization was used (630 W/l, exposure
time 30 minutes). The aim of the work was to study the effect of the polysaccharide complex (PC) in native and micronized form on the baking properties of wheat flour. The use of PCs, both in native and in micronized form, leads to an increase in swelling and strengthening of raw gluten. The maximum mass fraction of gluten when using a native PC is 38.6 %, which is 7.2 % more than the mass fraction of gluten of the control sample. The introduction of fucoidan and sodium alginate significantly strengthened gluten, as can be seen from the obtained IDC data (by 5 units). To study the forms of moisture bonding in gluten samples, differential scanning calorimetry and thermogravimetry studies were performed on a STA 449 F1 Jupiter synchronous thermal analysis device (NETZSCH, Germany). The rate of change of the heating temperature was 10 °C/min, the maximum heating temperature was 493 K. Using a PC had an effect on the amount of osmotically bound moisture, so when using a native complex, its amount increased by 70 %, and micronized - by 18 %. The amount of polyadsorption bound moisture is increased by 12 % for the sample obtained
using native PC, and by 6 % for the sample obtained using micronized. The amount of adsorption
moisture of the monomolecular layers decreased by 2 times in the gluten sample with the addition of native PC. Due to the faster penetration of water into the structure of the protein and polysaccharide complex, the amount of physically-mechanically bound moisture in experimental samples partially decreased (by 79 % when using the native form and by 13 % when using the mi- cronized form).
Описание:
Паймулина Анастасия Валерияновна, магистрант кафедры «Пищевые и биотехнологии
», Южно-Уральский государственный университет (г. Челябинск), aaaminaaa@mail.ru
Потороко Ирина Юрьевна, доктор технических наук, профессор кафедры «Пищевые и биотехнологии», Южно-Уральский государственный университет (г. Челябинск), irina_potoroko@mail.ru
Иванишова Ева, PhD, кафедра технологии и качества продукции, факультет биотехнологий
и пищевых наук, Словацкий сельскохозяйственный университет в Нитре (г. Нитра, Словацкая
Республика), eva.ivanisova@uniag.sk. Anastasia V. Paymulina, Master’s Degree Student of the Department of Food Technology and Biotechnology, South Ural State University (Chelyabinsk), aaaminaaa@mail.ru
Irina Yu. Potoroko, Doctor of Sciences (Engineering), Professor of the Department of Food Technology and Biotechnology, South Ural State University, Chelyabinsk, irina_potoroko@mail.ru
Eva Ivanishova, PhD, Department of Technology and Product Quality, Faculty of Biotechnology and Food Sciences, Slovak University of Agriculture in Nitra (Nitra, Slovakia), eva.ivanisova@uniag.sk